溶血空斑试验，又称空斑形成细胞（Plague Forming Cell, PFC）试验，是一种体外检测抗体形成细胞的方法。

小室液相法

实验方法原理     

溶血空斑试验，又称空斑形成细胞（Plague Forming Cell, PFC）试验，是一种体外检测抗体形成细胞的方法。将一定量洗涤过的绵羊红细胞注射入小鼠腹腔，四天后将小鼠杀死，取脾脏制成脾细胞悬液，内含抗体形成细胞。然后将脾细胞、绵羊红细胞，补体混合孵育。由于PFC 所分泌的抗体和绵羊红血球结合形成抗原抗体复合物，在补体作用下可使红细胞溶解，于特制的小室内形成肉眼可见的溶血空斑。一个空斑即代表一个抗体形成细胞。

实验材料       

ICR小鼠

试剂、试剂盒        

绵羊红血球补体

仪器、耗材     

解剖器械试管吸量管载玻片石蜡盘酒精灯微量加样器

实验步骤       

1.  小鼠免疫及脾细胞悬液的制备

将5 ％SRBC0.4 ml注射于小鼠腹腔，4 天后拉脱颈椎处死，取出脾脏放在已加入6 ml Hank's液的平皿中。在100 目不锈钢网上研磨，过滤混匀，从中吸取1 ml加入试管中，加满Hank's液混匀，离心1000 rpm，10 分钟。将沉淀的脾细胞恢复1 ml容积，即为约1×107 /ml浓度的细胞悬液。

2.  制作小室

取无脂载玻片（75 mm×25 mm）, 平置桌面上。用双面胶带在载玻片两端和中间各粘一条，然后再覆盖上同样的载玻片，即形成两个小室。将此双层玻片的一侧长边浸入融化的石腊池中以封闭小室的一边（无需浸入过深，以能封闭小室边缘为准）

3.  小室灌注细胞悬液

取 1×107 /ml脾细胞悬液100 μl

10 ％SRBC 200 μl

新配补体 200 μl

Hank's液 1 ml

混匀后，用尖吸管灌注小室、蜡封、标记、平放于玻片盘内，置37 ℃孵箱30—45 分钟。

注意事项        

1.  小室注入液体时不要留有气泡。

2.  小室边缘需用石蜡封严。

3.  37℃孵箱孵育时，必须放平，不可倾斜。

4.  观察结果时，应注意辨别空斑与气泡的区别，避免将气泡误认为溶血空斑。

其他   

一、实验结果

观察小室内的透明空斑，一个空斑即代表一个空斑形成细胞（PFC），即B细胞。