在多细胞生物发育过程中，一些不需要的细胞会以一种自主的方式死亡并被机体清除，这个过程被称为程序性细胞死亡（programmed cell death)。程序性细胞死亡多以细胞凋亡（apoptosis)的机制发生。除细胞凋亡外，细胞死亡还包括坏死（necrosis)和自噬性细胞死亡（autophagic cell death)等多种死亡形式。在细胞坏死初期，胞质内线粒体和内质网肿胀、崩解，蛋白质颗粒增多，进而细胞质呈现强嗜酸性，经苏木精/伊红染色后胞质呈深伊红色，细胞质膜发生渗漏，DNA降解，细胞内容物释放到胞外，引起周围组织炎症反应。

    早在20世纪60年代人们就已发现。当细胞在缺乏营养或发生应激反应时，可发生细胞自噬现象，细胞质中形成大量自噬泡，由双层膜包裹着待降解物质。随后，自噬泡与溶酶体融合，待降解物质经酶解后被细胞进一步利用。自噬在细胞的生长、发育和疾病发生中起着重要的作用。近来的研究表明，在某些条件下，细胞自噬也能导致细胞死亡，相应地，细胞凋亡则被称为I型程序性细胞死亡。

    凋亡细胞的基本特征主要包括：胞质凝缩，染色质聚集及边缘化，细胞核崩解，细胞以出芽的方式形成凋亡小体，并被邻近的巨噬细胞等吞噬消化。磷脂酰丝氨酸外翻。凋亡过程中细胞内溶物不被释放，故不会引起炎症反应。④凋亡细胞中仍存在蛋白质的合成反应。⑤内切核酸酶被活化，导致染色质DNA在核小体连接处断裂，形成180~200bp整数倍的核酸片断，凝胶电泳图谱呈梯带状（DNA ladder)等。

细胞凋亡的检测方法主要包括以下几种：

     细胞径HE、吖啶橙（AO)、Hoechst33342、Hoechst33258染色，利用光境或荧光显微镜对细胞形态学特征进行观测。其中Hoechst33342/PI双标记法是检测细胞凋亡的常规方法。PI是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，由于坏死细胞的膜透性发生改变，则能被PI染色。Hoechst33342是能能够与DNA特异结合的具有良好膜通透性的荧光染料，正常细胞、坏死细胞及凋亡细胞的DNA均可被Hoechst33342染色，当细胞经Hoechst33342/PI双染色后，坏死细胞呈PI强阳性染色（红色），而凋亡细胞或正常细胞呈PI低染，利用荧光显微镜技术结合凋亡细胞核形态的变化就可以将坏死细胞、凋亡细胞和正常细胞区分开来。利用DNA凝胶电泳及DNA片段原位标记法（TURNEL assay）检测凋亡细胞DNA的断裂。利用流式细胞仪检测亚G1期细胞的比例或利用Annexin V、PI联合标记法检测细胞膜磷脂酰丝氨酸翻转，正常活细胞Annexin V、PI均低染；凋亡细胞Annexin V高染、PI低染；坏死细胞PI高染。

【实验方法与步骤】

    （1）细胞凋亡的诱导：HeLa细胞常规传代培养至对数生长期(见细胞传代培养）。实验组细胞加入顺铂溶液（生理盐水配置）至终浓度为20μmo1/L,37℃，5% CO2条件下继续培养。空白实验对照加入等体积的生理盐水，同样条件继续培养。24h后进行染色及形态学观察。

    （2）胰酶消化细胞，将培养基上清及消化下来的细胞一同转入离心管中600~800r/min离心10min。

    （3）吸去上清，用1mL PBS重悬细胞沉淀，并转入1.5mL微量离心管中，600~800r/min离心10min。

    （4）吸去上清，用500μL PBS重量细胞沉淀，取178μL转入0.5mL的微量离心管中，加入PI 20μL（终浓度100μg/mL），Hoechest 33342 2μL（终浓度10μg/mL），混匀，37℃温箱中避光标记15min。

    （5）600~800r/min离心10min，弃上清，加50μL PBS重悬细胞。

    （6）分别从实验组及对照组中取10μL细胞悬液滴于载玻片上，盖上盖玻片。

    （7）荧光显微镜20倍物镜在紫外光激发下观察，可观察到凋亡细胞核形态发生明显的改变，出现染色质凝集及边缘化。

【注意事项】

    （1）诱导细胞凋亡后收集细胞时，注意要同时收集细胞培养基上清液。

    （2）悬浮细胞时动作要轻柔，避免损伤细胞。

    （3）在实验中可同时设计坏死细胞的对照，例如，取正常细胞经低渗后进行染色观察。