一、原理
1、E .coli 表达系统
E .coli 是重要的原核表达体系。在重组基因转化入E .coli 菌株以后,通过温度的控制,诱导其在宿主菌内表达目的蛋白质,将表达样品进行SDS-PAGE 以检测表达蛋白质。
2、外源基因的诱导表达
提高外源基因表达水平的基本手段之一,就是将宿主菌的生长与外源基因的表达分成两个阶段,以减轻宿主菌的负荷。常用的有温度诱导和药物诱导。本实验采用异丙基硫代-β-D-半乳糖昔(IPTG)诱导外源基因表达。
不同的表达质粒表达方法并不完全相同,因启动子不同,诱导表达要根据具体情况而定。
二、材料
1、诱导表达材料
(1 )LB (Luria—Bertani))培养基
酵母膏 (Yeast extract)5g 蛋白胨 (Peptone)10g
NaCl10g 琼脂 (Agar)1-2%
蒸馏水 (Distilled water)1000ml pH 7.0
适用范围:大肠杆菌
(2 )IPTG 贮备液:2 g IPTG溶于10 ml 蒸馏水中,0 .22 μm 滤膜过滤除菌,分装成1 ml /份,-20 ℃ 保存。
(3 )l× 凝胶电泳加样缓冲液:
50 mmol / L Tris -CI (pH 6 .8 )
50 mmol / L DTT
2 % SDS (电泳级)
0.1 % 溴酚蓝
10 % 甘油
2、大肠杆菌包涵体的分离与蛋白纯化材料
酶溶法
(1)裂解缓冲液:
50 mmol / L Tris-CI (pH 8 .0 )
1 mmol / L EDTA
100 mmol / LNaCI
(2)50 mmol / L
(3)10 mg / ml 溶菌酶。
(4)脱氧胆酸。
(5)1 mg / ml DNase I。
超声破碎法
(1 )TE 缓冲液。
(2 )2×SDS -PAGE 凝胶电泳加样缓冲液:
100 mmol / L Tris-HCI (pH 8 .0 )
100 mmol / L DTT
4 %SDS
0.2 % 溴酚蓝
20 % 甘油
三、实验方案
1、外源基因的诱导表达
(1 )用适当的限制性内切核酸酶消化载体DNA 和目的基因。
(2 )按连接步骤连接目的基因和载体,并转化到相应的宿主菌。
(3 )筛选出含重组子的转化菌落,提取质粒DNA 作限制性内切核酸酶图谱,DNA 序列测定,确定无误后进行下一步。
(4 )如果表达载体的原核启动子为PL 启动子,则在30 -32 ℃ 培养数小时,使培养液的OD600达0.4-0.6 ,迅速使温度升至42 ℃ 继续培养3 -5h ;如果表达载体的原核启动子为tac 等,则37 ℃培养细菌数小时达到对数生长期后加IPTG 至终浓度为1 mmol / L。继续培养3 -5h 。
(5 )取上述培养液1 ml ,1000g 离心,1 min ,沉淀,加100 μL 聚丙烯酰胺凝胶电泳上样缓冲液后,作SDS -PAGE 检测。
2、大肠杆菌包涵体的分离与蛋白质纯化
细菌的裂解
常用方法有:① 高温珠磨法;② 高压匀浆;③ 超声破碎法;④ 酶溶法;⑤ 化学渗透等。前三种方法属机械破碎法,并且方法① 、② 已在工业生产中得到应用,后三种方法在实验室研究中应用较为广泛。下面介绍酶溶法和超声破碎法的实验步骤。
(1)酶溶法。常用的溶解酶有溶菌酶;β-1,3 -葡聚糖酶;β-1,6 -葡聚糖酶;蛋白酶;壳多糖酶;糖昔酶等。溶菌酶主要对细菌类有作用,而其他几种酶对酵母作用显著。主要步骤为:
① 4 ℃ ,5000rpm 离心,15 min ,收集诱导表达的细菌培养液(100 ml )。弃上清,约每克湿菌加3 ml 裂解缓冲液,悬浮沉淀。
② 每克菌加8μL PMSF 及80μL 溶菌酶,搅拌20 min ;边搅拌边每克菌加4 mg 脱氧胆酸(在冷室中进行)。
超声破碎法。声频为15-20 kHz 的超声波在高强度声能输入下可以进行细胞破碎,在处理少量样品时操作简便,液体量损失较少,同时还可对染色体DNA 进行剪切,大大降低液体的粘稠度。
① 收集1 L 诱导表达的工程菌,40 ℃ ,5000r pm 离心,15 min ;弃上清,约每克湿菌加3 mlTE 缓冲液。
② 按超声处理仪厂家提供的功能参数进行破菌;10 000g 离心,15min ,分别收集上清液和沉淀。
③ 分别取少量上清和沉淀,加入等体积的2× 凝胶电泳加样缓冲液,进行SDS -PAGE 。
注意事项:超声破碎与声频、声能、处理时间、细胞浓度、菌种类型等因素有关,应根据具体情况掌握;超声波破菌前,标本经3 -4 次冻溶后更容易破碎。
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