免疫荧光
从切片完成之后开始
免疫实验荧光器材
避光场所，湿盒，烘箱等加温设备，吸水的纸，移液枪，1.5ml EP管，微波炉，抗原修复用的容器，ph试纸或ph仪，盖玻片，多聚赖氨酸包被的载玻片等
免疫荧光实验试剂
一抗
荧光二抗
Hoechst 33342（与双链DNA结合，显核，蓝荧光）
抗体稀释液（含1%BSA的PBS）
10×PBS（NaCl 42.5g，NaH?2PO4·2H2O1.482g， Na2H?PO4·12H2O 14.5055g，定容至500ml，配完最好高压灭菌一下）。
PBS（10×PBS稀释10倍，再调ph至7.2-7.4。用得可快了）。
10×柠檬酸盐抗原修复液（C6H8O7·H2O
2g， Na3C6H5O7·2H2O
11.8g，定容至500ml，配完最好高压灭菌一下）。
柠檬酸盐抗原修复液（10×柠檬酸盐抗原修复液稀释10倍，再调ph至6.0）。
封片剂（0.672g
NaH?CO3
加40ml蒸馏水（其为0.2mol/L），以1mol/L的NaOH调其ph至9.0左右（ NaOH 加0.75ml左右吧）。吸取1ml此液体，与1ml 100%甘油混匀即可）
蒸馏水
免疫荧光程序：
包埋好的标本用切片机切石蜡切片（2微米），并将蜡片贴附于多聚赖氨酸处理过的载玻片上（可购买，我用的是北京中衫的，从不掉片）。
经60℃烘片2-8小时（都试过，没啥差别，但非实质性器官应适当延长时间）。
二甲苯Ⅰ脱蜡4分钟（若要保证脱蜡完全可将其加热至40-60℃），二甲苯Ⅱ脱蜡6分钟。
梯度酒精复水：100%酒精1分钟，95%酒精1分钟，75%酒精1分钟（这个梯度是没问题的，而且都是现成的医用酒精，不用配制），蒸馏水2分钟，PBS 2分钟×2次。
进行抗原修复：将切片置于0.1mol/L且ph=6.0的枸橼酸液修复液中，用微波炉中火加热6分钟至微微沸腾，再用中低火力维持10分钟，停止加热后自然冷却20-30分钟（我想还是煮沸6分钟×4次更好）。
PBS浸洗2分钟后滴加0.3%tritonX-100透膜剂透膜12分钟（不透膜也没关系，反正细胞早就被切开了）。但注意细胞膜表面的整合蛋白不能加tritonX-100，否则会被洗掉。
用PBS 2分钟×2次洗去透膜液，用滤纸擦去标本外的PBS，滴加封闭血清（无色的10%FBS或免疫组化试剂盒北京中衫中的封闭液）在湿盒中37℃封闭30分钟（室温30分钟也可）。
用滤纸擦去封闭液，勿洗。滴加适宜浓度的一抗置湿盒中4℃孵育过夜（37℃1小时多也差不多），再用PBS 3分钟×5次洗去一抗，用滤纸擦去标本外的PBS。
滴加荧光二抗室温置湿盒中避光孵育1-1.5小时，此时可在荧光显微镜下迅速观察是否着染，以确定终止时间。用PBS 3分钟×3次洗去二抗，用滤纸擦去标本外的PBS。
滴加 Hoechst33342 避光孵育2分钟，可对标本进行显核，蓝色荧光，效果极佳。用PBS 1分钟×3次洗去Hoechst 33342，用滤纸擦去标本外的PBS
最后用含抗荧光淬灭剂的封片液碧云天封片（可自配），并在荧光显微镜下立即观察。
照相后可用photoshop将同一视野下不同的荧光图像叠加，效果不错，有一篇参考文献支持。
▲注：若一张切片同时做两种抗体的免疫荧光，则加一抗时可将两种一抗按各自所需的浓度混合，但要注意抗体要来源于不同的动物。加二抗时也可将两种二抗按各自所需的浓度混合，但要注意二抗要有不同的颜色。
